一、四唑鹽(MTT)比色法
檢測細胞存活和生長的方法除前面所介紹的方法外，還可用四唑鹽比色試驗(MTT)。由于這種方法與細胞計數法、軟瓊脂克隆形成試驗和3H-TdR摻入試驗有良好的相關性，且靈敏度高、重復性好、無放射性污染等，所以常用于細胞活力的檢測。此法的主要原理是：活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性的MTT還原為難溶性的藍紫色結晶物，并沉積在細胞中，而死細胞無此功能。二甲基亞砜(DMSO)能溶解細胞中的紫色結晶物，用酶聯免疫檢測，以在490nm波長處測定其光吸收值，可間接反映活細胞數量。在一定細胞數范圍內，MTT結晶物形成的量與細胞數成正比。此法已廣泛用于一些生物活性因子的活性檢測、抗腫瘤藥物的篩選、細胞毒性試驗和腫瘤放射敏感性的測定等。
基本步驟：
（1）用0.25%胰蛋白酶消化細胞使其成為單細胞，用含10%胎牛血清的RPMI1640培養液配成1×109細胞/L的單細胞懸液，將細胞接種于96孔培養板中，每孔100μL。
(2)將培養板置CO2孵箱中，在37℃ 5% CO2條件下，培養3～5天(根據實驗目的而定)。
(3)培養3～5天后，每孔加入MTT溶液(將MTT按5mg/mL溶于0.01mol/L，pH7.2的PBS中，輕輕吹打至全部溶解，過濾除菌，4℃避光保存，保存時間一般不超過兩周)10μL，繼續置培養箱孵育3～6小時，終止培養，加10%SDS-HCl 100μL/孔37°C數小時，將細胞內和細胞周圍的MTT一甲月贊 顆粒充分溶解。
（4）用酶聯免疫檢測儀測定各孔光吸收值(OD)，選波長490nm。以時間為橫軸，光吸收值為縱軸繪制細胞生長曲線。
用此法測細胞活力，為保證結果的準確性，最好在試驗前測定每種細胞的貼壁率、倍增時間以及不同接種細胞數條件下的生長曲線，再確定每孔細胞接種數和培養時間，以保證培養終止時不至過滿。另外，試驗時應設空白對照，比色時，以空白孔調零。
二、細胞蛋白質含量測定法(考馬斯亮藍測定法)
此法基本原理是：考馬斯亮藍在酸性溶液與蛋白質結合，在595nm波長處呈最大吸收，其光吸收值與蛋白質含量呈正相關。此法主要用于測定酶、受體及細胞外代謝產物特異性活性的度量單位。
基本步驟：
（1）用0.25%胰蛋白酶消化細胞，制成懸液，用10%胎牛血清的RPMI1640培養液調整細胞密度為1×104細胞/mL，接種于24孔培養板，每孔1mL，置37℃ 5%CO2條件下培養一定時間。
（2）用胰蛋白酶消化分散，培養板的細胞懸浮在PBS中，計數細胞數，取106細胞以1000r/min離心5分鐘，棄上清液，加0.5ml 0.1%SDS或0.3mol/L NaOH，置100℃煮3分鐘，使細胞裂解。
（3）取0.1mL考馬斯亮藍染液與100μL上述細胞裂解液混勻，放置10分鐘。
（4）用可見光分光光度計在595nm波長處測定溶液的光吸收值。以溶劑為空白對照，以已知量的牛血清蛋白蛋白（BSA1～50μg）為標準品，繪制標準曲線。然后根據標準曲線推算樣品中蛋白質含量。
三、細胞蛋白質合成的3H-亮氨酸摻入試驗
此法的基本原理是，細胞在合成蛋白質時需攝取外源性氨基酸，用同位素標記氨基酸如3H-亮氨酸可以摻入細胞蛋白質合成代謝中，通過測定細胞的放射性強度，可了解細胞蛋白質合成代謝狀況。
基本步驟：
（1）取對數生長期細胞，用0.25%胰蛋白酶消化，懸浮于含10%胎牛血清的RPMI1640培養液中，調整細胞密度至107～109/L，接種于24孔培養板，每孔1mL。
（2）將培養板置37℃ 5% CO2孵箱中培養至細胞處于對數生長期時，每孔加100μL預溫37℃的3H-亮氨酸(終濃度為1.85×108Bq/mL)。
（3）繼續培養4～24小時(根據預先摸索的摻入時間定)。
（4）終止培養，取出培養板，小心吸出培養上清液，用預冷的PBS小心洗滌，晾干。如果細胞松散，可先用甲醇固定10分鐘。
（5）把培養板放在冰蓋上，每孔加1mL 10%三氯醋酸(TCA)，在4℃放置10分鐘，吸取上清液。
（6）用甲醇洗滌、晾干。
（7）每孔加0.5mL 10.3mol/L NaOH，1% SDS,室溫下放置30分鐘。
（8）混勻、移入閃爍瓶中，加5mL閃爍液，用液體閃爍計數儀測定每分脈沖數(cpm)，以cpm/106細胞或cpm/mg蛋白表示。
對懸浮生長的細胞則采用離心法處理。
四、細胞DNA合成測定
(一)3H-TdR摻入法
此法的基本原理是：胸腺嘧啶核苷(TdR)是DNA特有的堿基，也是DNA合成的必需物質，。用同位素3H標記TdR即3H-TdR作為DNA合成的前體能摻入DAN合成代謝過程，通過測定細胞的放射性強度，可以反映細胞DAN的代謝及細胞增殖情況。
基本步驟：
（1）取對數生長期細胞，制成3×108細胞/L的細胞懸液，接種于24孔培養板中，每孔1mL。
（2）將培養板放入37℃ 5%CO2孵箱中培養24小時左右。
（3）在細胞處于對數生長期時，每孔加入100μL 3H-TdR(用HBSS配制3.7×108Bq/mL濃度，過濾除菌)，使終濃度為3.7×107Bq/mL。
（4）繼續培養1～24小時(根據實驗要求確定)。
（5）終止培養，小心吸棄培養上清液，用HBSS漂洗單層細胞2次，然后加2mL預冷的10%TCA(三氯醋酸)，放置10分鐘。如果細胞松散，應先用甲醇固定10分鐘。再用10%TCA重復洗2次，每次5分鐘。
（6）每孔加0.5mL 0.3mol/L NaOH,在60℃處理30分鐘，然后使之冷至室溫。
（7）收集上述裂解液，移入閃爍瓶中，加5mL閃爍液，用液體閃爍計數儀測定每分鐘脈沖數(cpm),結果以cpm/106細胞表示。
(二)流式細胞儀測定DNA合成
用流式細胞儀測定細胞增殖同期和DNA合成是90年代發展起來的新手段，不僅快速、準確、效果好，而且消除同位素標記的許多繁瑣方法和放射性污染。
基本檢測程序：
（1）取80%至接近匯合的細胞，用0.25%胰蛋白酶消化細胞，制備成單細胞懸液，細胞密度1×109細胞/L，注意不能留有細胞碎片。
（2）進行流式儀檢測。除檢測細胞周期時相變化和反應DNA合成情況外，還可了解染色體倍性；結合熒光免疫法，還可對細胞膜進行分析等。
